蛋白濃度檢測是一個實驗，是根據吸光值可以推算出蛋白濃度.堿性條件下，蛋白將Cu2+還原為Cu+， Cu+與BCA試劑形成紫顏色的絡合物，測定其在562nm處的吸收值，并與標準曲線對比，即可計算待測蛋白的濃度。

操作說明
一. 微孔酶標儀法
1. 配制工作液：根據標準品和樣品數量，按50體積 BCA試劑A 加1體積 BCA試劑B（50:1）配制成 BCA工作液，充分混勻 (混合時可能會有渾濁，但混勻后就會消失)。BCA 工作液室溫 24 小時內穩定。
2. 稀釋標準品：取 10μL BSA 標準品用 PBS 稀釋至 100μL（樣品一般可用 PBS 稀釋），使終濃度為 0.5mg/ml。將標準品按 0, 2, 4, 6, 8, 12, 16, 20 μL加到 96 孔板的蛋白標準品孔中，加 PBS 補足至 20μL。
3. 將樣品作適當稀釋（最好多做幾個梯度，如作 2 倍、4 倍、8 倍稀釋），加 20μL到 96 孔板的樣品孔中。由于移液器在取小量樣品時誤差偏大，標準線前面的點可能不很準確，所以盡可能的讓樣品點落在標準線 1/2 后。
4. 各孔加入 200μL BCA 工作液，37℃放置 15-30 分鐘。用酶標儀測定 A562nm，根據標準曲線計算出蛋白濃度。使用溫箱孵育時，應注意防止因水分蒸發影響檢測結果。

二. 蛋白濃度分光光度計法
如沒有酶標儀，可用分光光度計在離心管中混勻后加入比色皿中比色。

蛋白濃度注意事項：
1. 長期不用時，BCA試劑B與PBS 稀釋液可置于 2-8℃保存，如發現細菌污染則應丟棄。BCA試劑A在低溫條件下出現結晶沉淀時，可 37℃溫育使其完全溶解, 不影響使用。
2. 樣品中若含有較多干擾物質時，請采用 Bradford 蛋白濃度測定試劑盒。
3. 待測蛋白溶解于什么樣的稀釋液中，蛋白標準也宜溶解于什么樣的稀釋液中，否者待測蛋白不蛋白標準中所含非蛋白成分不一致，有可能導致測定不準確。
4. 待測蛋白和蛋白標準加入 BCA 工作液后，如果發現檢測效果不佳，可以室溫放置 2h或 60℃放置 30min，顏色會隨著時間的延長不斷加深。顯色反應也會隨溫度升高而加快。如果濃度較低，可以適當延長孵育時間或在較高溫度下孵育。
5. 為了加快 BCA 法測定蛋白濃度的速度可以適當加熱，但是切勿過熱，否則易失效。
6. 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。